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Una società in crescita: il problema degli scarti e dei rifiuti
La popolazione mondiale attuale ammonta a 7,6 miliardi, raggiungerà quota 8,6 miliardi nel 2030 e 9,8 miliardi nel 2050 [1]. Questo trend si tradurrà in un incremento nella produzione di rifiuti, previsti passare dai 2 miliardi di tonnellate del 2016 a 3,4 miliardi di tonnellate nel 2050 [2]. Considerando più nel dettaglio il panorama agri-food, secondo il rapporto FAO ogni anno un terzo del cibo prodotto a livello mondiale e destinato al consumo umano viene perso (Food Loss) o scartato (Food Waste) [3].
Per Food Loss si intende la diminuzione in termini di massa o valore nutrizionale di cibo originariamente destinato al consumo umano, a causa di inefficienze lungo la catena distributiva, insufficienti conoscenze da parte degli attori della filiera alimentare e distanza geografica. Per Food Waste si intendono gli alimenti adeguati al consumo umano, scartati in quanto scaduti o deteriorati. In questo secondo caso i motivi sono imputabili a comportamenti inappropriati da parte dei rivenditori o abitudini scorrette dei consumatori finali. Unendo le due definizioni, si parla genericamente di Food Wastage [3].
L’importanza dell’economia circolare per ridurre il Food Wastage
La produzione agricola è responsabile per il 33% del volume totale di Food Wastage ed in particolare le fasi di lavorazione, distribuzione e consumo finale dei prodotti sono le più impattanti. I dati sono allarmanti, riutilizzare l’intrinseco valore di questi scarti organici si presenta come una grande opportunità e necessità per gli anni a venire. Ad oggi il trattamento biologico dei rifiuti organici porta alla produzione di biogas e biometano, tuttavia non tutte le regioni italiane dispongono di impianti quantitativamente adeguati.
In ottica futura, l’Agenzia Europea per l’Ambiente (EEA) ha posto alcuni obiettivi fondamentali da raggiungere entro il 2050: utilizzo efficiente delle risorse, economia a bassa produzione di anidride carbonica e adeguato sviluppo sociale. A livello mondiale è necessaria una transizione verso l’ottica di economia circolare, nella quale cui si riutilizzano e valorizzano i materiali di scarto, per inserirli nuovamente nella supply chain. Ciò si presenta come una occasione di crescita economica e riduzione degli sprechi [4], l’economia circolare infatti riporta l’attenzione sul prodotto, sui suoi componenti e soprattutto sulla loro rimessa in vigore [5–7].
Strategia innovativa di valorizzazione delle biomasse: il ruolo degli insetti
Ad oggi una soluzione innovativa e vincente di valorizzazione dei sottoprodotti vede coinvolti gli insetti ed in particolare la specie “Black soldier fly, mosca soldato nero” (BSF). È un insetto non parassita e patogeno per piante, animali e uomo, in quanto non danneggia colture vegetali e non rappresenta vettore di zoonosi [8]. La larva nera di mosca soldato è in grado di alimentarsi con voracità, sfruttando materia in decomposizione e riducendone il contenuto di sostanza secca fino al 40% [9, 10]. La letteratura scientifica ha dimostrato l’abilità di BSF nel consumare ogni giorno, fino al doppio del suo peso corporeo in biomassa, riducendo il volume di materia organica fino al 42-75% [11–13].
Durante la fase larvale BSF è un insetto polifago, in grado di nutrirsi su un’ampia gamma di substrati come scarti di cucina [12], [14], letame [15], [16] e sottoprodotti vegetali in generale [17]–[20]. Al contrario, allo stadio di adulto questo insetto è privo di apparato boccale e perciò non in grado di cibarsi, sfrutta la risorse lipidiche accumulate durante la fase larvale per riprodursi [21].
La composizione standard della larva nera si aggira intorno al 31,7- 47,6% di proteine e l’11,8 – 34,3% di grassi [10], [13], [22], tuttavia è fortemente influenzate dal substrato di crescita, confermando precise necessità nutrizionali da perseguire per poter ottenere i migliori risultati di crescita [19]. I nutrienti di maggiore interesse per una crescita efficiente di BSF sono proteine, carboidrati non fibrosi e lipidi [23]–[25]. In particolare, miscelare più materiali quali substrati di allevamento è la strategia consigliata, in quando offre una dieta bilanciata in termini di rapporto Carbonio/Azoto [26], [27].
La mosca soldato nero per la trasformazione sostenibile dei residui organici
L’utilizzo di BSF rientra tra le tecnologie CORS (Conversion of Organic Refuse by Saprophages) per il trattamento di residui organici. E’ una strategia nuova e flessibile, grazie all’innata capacità di questa specie di ridurre materiale organico, accumulare nutrienti e creare valore aggiunto [11], [28], [29].
È una tecnologia caratterizzata da bassi costi di mantenimento, ridotto impatto ambientale e necessità di spazio. Detiene la potenzialità di trasformare il mondo agricolo in una chiave più sostenibile, canalizzando prodotti di scarto nella generazione di un nuovo prodotto [30]. Il suo utilizzo si presenta vincente in quanto la larva adulta presenta una composizione ricca in proteine e grassi [8], valide fonti alimentari per il nutrimento degli animali [22], [31].
Per fornire un quadro più completo, secondo la definizione di “animale d’allevamento” presentata dal regolamento CE n. 1069/2009, gli insetti allevati per divenire feed sono considerati animali d’allevamento a tutti gli effetti. Sono quindi soggetti a norme in materia di alimentazione [32, 33] secondo le quali è vietato l’uso di proteine derivate da ruminanti, di rifiuti di cucina e ristorazione, di farine di carne e ossa e di letami quali substrati di crescita per gli insetti. Comprese le limitazioni normative, l’utilizzo di quanto classificato come sottoprodotto vegetale è una fonte adeguata all’allevamento di tale specie animali ed un efficiente metodo di riduzione degli scarti organici (Food Waste).
Mosca soldato nero: un sistema zero waste
La valorizzazione dei sottoprodotti tramite l’allevamento di mosca soldato nero porta alla generazione di larve di insetto e residuo di allevamento, due componenti rilevanti per i settori feed e agricolo rispettivamente.
Larve di Black soldier fly: possibili utilizzi
Per quanto riguarda l’utilizzo degli insetti come fonte nutritiva per il settore feed, la Commissione Europea ha indicato le seguenti 8 specie riconosciute sicure ed utilizzabili: Hermetia illucens, Musca domestica, Tenebrio Molitor, Alphitobius diaperinus, Acheta domesticus, Gryllodes sigillatus, Gryllus assimilis, and Bombix mori. Più nel dettaglio, l’impiego di insetti è stato autorizzato per il settore avicolo, acquacoltura, suinicoltura e pet-food [34], [35].
L’elevata energia metabolizzabile, la digeribilità ileale degli aminoacidi ed il contenuto di minerali di BSF, rendono questo insetto utile nella dieta degli avicoli [36, 37]. In aggiunta, le galline in natura sono abituate a cibarsi di insetti vivi, perciò l’introduzione di questo ingrediente nella loro dieta ne migliora il benessere e riduce il beccaggio tra gli animali stessi [38]. L’integrazione di BSF nella dieta di avicoli si aggira solitamente intorno al 15%, tale quantitativo non porta a conseguenze negative sulle performance produttive degli animali o nelle caratteristiche sensoriali di carne e uova [39], [40].
Nel settore dell’allevamento suini, l’inserimento di BSF nella dieta di suinetti ha dimostrato un effetto positivo sulla salute intestinale [41- 43], grazie al contenuto delle larve in acido laurico (C12:0) che agisce da antibatteriche e antivirale [44 – 46]. Inoltre, l’integrazione di lave di insetto nella loro dieta ha registrato anche effetti positivi in termini di efficienza alimentare, peso corporeo finale e stato di salute degli animali [47].
Per quanto concerne l’acquacoltura, la sostituzione fino al 50% della farina di pesce con larve di BSF non ha effetti negativi sulla sopravvivenza degli animali e sulle loro prestazioni di crescita, così come sulla qualità finale della carne [48-50]. Anche in questo settore, molti studi presenti in letteratura hanno riscontrato un effetto positivo dell’acido laurico di BSF nei confronti dei pesci, promuovendone il benessere dell’intestino [51-55].
Residuo di allevamento di Black soldier fly: possibili utilizzi
A seguito della biovalorizzazione operata da parte di BSF è possibile ricavare un sottoprodotto che si dimostra un valido mezzo di arricchimento per il suolo agricolo. Infatti, si definisce Frass la miscela di substrato ottenuta dai residui di allevamento e dagli escrementi dell’insetto [56]. La caratterizzazione chimica del Frass risente direttamente del substrato di crescita utilizzato per l’insetto [57- 58], in generale presenta contenuti rilevanti di azoto, fosforo e potassio. L’utilizzo del Frass come nutriente nei terreni agricoli risponde ai principi dell’economia circolare, chiudendo il ciclo dell’allevamento e reintroducendo i nutrienti residui nel suolo. È possibile creare un’attività zero waste, apportando chiari benefici anche alle coltivazioni.
Il residuo di allevamento fornisce macro e micronutrienti a lento rilascio, facilmente assimilabili da parte delle piante. È stato studiato come aumenti la biomassa ed il contenuto nutrizionale di ortaggi (lattuga), cereali (orzo, frumento, mais, colza) e colture speciali (vigneti). È inoltre in grado di migliorare la capacità di ritenzione idrica del suolo e lo arricchisce in microrganismi benefici per la salute delle piante. L’utilizzo di Frass come arricchimento del suolo agricolo aumenta la tolleranza delle piante agli stress abiotici e la loro resistenza agli agenti patogeni, infatti la chitina in esso contenuta, derivante dall’esoscheletro degli insetti, attivando le risposte naturali di difesa delle piante [59].
Conclusioni
L’utilizzo di insetti per la valorizzazione dei sottoprodotti agro-alimentare rappresenta una strategia innovativa, grazie alla quale è possibile chiudere il ciclo dei materiali all’interno della filiera agri-food. Ciò dà vita ad un sistema di produzione zero waste, non si tratta di una forzatura verso il consumo di insetti da parte dell’uomo, ma altresì dell’applicazione di un processo naturale a basso impatto ambientale.
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[1] UN, «World Population Prospect. 2017 Revision.» 2017.
[2] S. Kaza, L. C. Yao, P. Bhada-Tata, e F. Van Woerden, What a Waste 2.0: A Global Snapshot of Solid Waste Management to 2050. Washington, DC: World Bank, 2018.
[3] FAO, A c. di, Moving forward on food loss and waste reduction. in The state of food and agriculture, no. 2019. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2019.
[4] P. Ghisellini, C. Cialani, e S. Ulgiati, «A review on circular economy: the expected transition to a balanced interplay of environmental and economic systems», J. Clean. Prod., vol. 114, pp. 11–32, feb. 2016.
[5] M. Braungart, W. McDonough, e A. Bollinger, «Cradle-to-cradle design: creating healthy emissions – a strategy for eco-effective product and system design», J. Clean. Prod., vol. 15, fasc. 13–14, pp. 1337–1348, set. 2007.
[6] J. R. Mihelcic et al., «Sustainability Science and Engineering: The Emergence of a New Metadiscipline», Environ. Sci. Technol., vol. 37, fasc. 23, pp. 5314–5324, dic. 2003.
[7] A. Rashid, F. M. A. Asif, P. Krajnik, e C. M. Nicolescu, «Resource Conservative Manufacturing: an essential change in business and technology paradigm for sustainable manufacturing», J. Clean. Prod., vol. 57, pp. 166–177, ott. 2013.
[8] H. Čičková, G. L. Newton, R. C. Lacy, e M. Kozánek, «The use of fly larvae for organic waste treatment», Waste Manag., vol. 35, pp. 68–80, gen. 2015.
[9] S. Diener, C. Zurbrügg, e K. Tockner, «Conversion of organic material by black soldier fly larvae: establishing optimal feeding rates», Waste Manag. Res. J. Sustain. Circ. Econ., vol. 27, fasc. 6, pp. 603–610, set. 2009.
[10] S. St-Hilaire et al., «Fly Prepupae as a Feedstuff for Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss», J. World Aquac. Soc., vol. 38, fasc. 1, pp. 59–67, mar. 2007.
[11] D. Craig Sheppard, G. Larry Newton, S. A. Thompson, e S. Savage, «A value added manure management system using the black soldier fly», Bioresour. Technol., vol. 50, fasc. 3, pp. 275–279, gen. 1994.
[12] S. Diener, N. M. Studt Solano, F. Roa Gutiérrez, C. Zurbrügg, e K. Tockner, «Biological Treatment of Municipal Organic Waste using Black Soldier Fly Larvae», Waste Biomass Valorization, vol. 2, fasc. 4, pp. 357–363, nov. 2011.
[13] L. Newton et al., «The black soldier fly, Hermetia illucens, as a manure management/resource recovery tool», gen. 2005.
[14] T. T. X. Nguyen, J. K. Tomberlin, e S. Vanlaerhoven, «Ability of Black Soldier Fly (Diptera: Stratiomyidae) Larvae to Recycle Food Waste», Environ. Entomol., vol. 44, fasc. 2, pp. 406–410, apr. 2015.
[15] H. M. Myers, J. K. Tomberlin, B. D. Lambert, e D. Kattes, «Development of Black Soldier Fly (Diptera: Stratiomyidae) Larvae Fed Dairy Manure», Environ. Entomol., vol. 37, fasc. 1, pp. 11–15, feb. 2008.
[16] F. Zhou, J. K. Tomberlin, L. Zheng, Z. Yu, e J. Zhang, «Developmental and Waste Reduction Plasticity of Three Black Soldier Fly Strains (Diptera: Stratiomyidae) Raised on Different Livestock Manures», J. Med. Entomol., vol. 50, fasc. 6, pp. 1224–1230, nov. 2013.
[17] L. Bava et al., «Rearing of Hermetia Illucens on Different Organic By-Products: Influence on Growth, Waste Reduction, and Environmental Impact», Animals, vol. 9, fasc. 6, p. 289, mag. 2019.
[18] C. Jucker, D. Erba, M. G. Leonardi, D. Lupi, e S. Savoldelli, «Assessment of Vegetable and Fruit Substrates as Potential Rearing Media for Hermetia illucens (Diptera: Stratiomyidae) Larvae», Environ. Entomol., vol. 46, fasc. 6, pp. 1415–1423, dic. 2017.
[19] M. Meneguz et al., «Effect of rearing substrate on growth performance, waste reduction efficiency and chemical composition of black soldier fly ( Hermetia illucens ) larvae: Rearing substrate effects on performance and nutritional composition of black soldier fly», J. Sci. Food Agric., vol. 98, fasc. 15, pp. 5776–5784, dic. 2018.
[20] T. Spranghers et al., «Nutritional composition of black soldier fly ( Hermetia illucens ) prepupae reared on different organic waste substrates: Nutritional composition of black soldier fly», J. Sci. Food Agric., vol. 97, fasc. 8, pp. 2594–2600, giu. 2017.
[21] kwanho Park, W. Kim, E. Kim, J.-Y. Choi, e S.-H. Kim, «Effect of adult population density on egg production in the black soldier fly, Hermetia illucens (Diptera: Stratiomyidae)», Int. J. Ind. Entomol., vol. 33, fasc. 2, pp. 92–95, dic. 2016.
[22] Y.-S. Wang e M. Shelomi, «Review of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) as Animal Feed and Human Food», Foods, vol. 6, fasc. 10, p. 91, ott. 2017.
[23] K. Barragán-Fonseca, J. Pineda-Mejia, M. Dicke, e J. J. A. van Loon, «Performance of the Black Soldier Fly (Diptera: Stratiomyidae) on Vegetable Residue-Based Diets Formulated Based on Protein and Carbohydrate Contents», J. Econ. Entomol., set. 2018.
[24] J. J. A. Beniers e R. I. Graham, «Effect of protein and carbohydrate feed concentrations on the growth and composition of black soldier fly ( Hermetia illucens ) larvae», J. Insects Food Feed, vol. 5, fasc. 3, pp. 193–199, lug. 2019.
[25] C. Lalander, S. Diener, C. Zurbrügg, e B. Vinnerås, «Effects of feedstock on larval development and process efficiency in waste treatment with black soldier fly (Hermetia illucens)», J. Clean. Prod., vol. 208, pp. 211–219, gen. 2019.
[26] M. Anjum, A. Khalid, T. Mahmood, e I. Aziz, «Anaerobic co-digestion of catering waste with partially pretreated lignocellulosic crop residues», J. Clean. Prod., vol. 117, pp. 56–63, mar. 2016.
[27] R. Li, S. Chen, X. Li, J. Saifullah Lar, Y. He, e B. Zhu, «Anaerobic Codigestion of Kitchen Waste with Cattle Manure for Biogas Production», Energy Fuels, vol. 23, fasc. 4, pp. 2225–2228, apr. 2009.
[28] C. Lalander, Å. Nordberg, e B. Vinnerås, «A comparison in product-value potential in four treatment strategies for food waste and faeces – assessing composting, fly larvae composting and anaerobic digestion», GCB Bioenergy, vol. 10, fasc. 2, pp. 84–91, feb. 2018.
[29] H. P. S. Makkar, G. Tran, V. Heuzé, e P. Ankers, «State-of-the-art on use of insects as animal feed», Anim. Feed Sci. Technol., vol. 197, pp. 1–33, nov. 2014.
[30] S. Smetana, M. Palanisamy, A. Mathys, e V. Heinz, «Sustainability of insect use for feed and food: Life Cycle Assessment perspective», J. Clean. Prod., vol. 137, pp. 11–751, nov. 2016.
[31] A. Singh e K. Kumari, «An inclusive approach for organic waste treatment and valorisation using Black Soldier Fly larvae: A review», J. Environ. Manage., vol. 251, p. 109569, dic. 2019.
[32] E. European Commission, «REGULATION (EC) No 999/2001 OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 May 2001 laying down rules for the prevention, control and eradication of certain transmissible spongiform encephalopathies». 2001.
[33] E. European Commission, «REGULATION (EC) No 1069/2009 OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 21 October 2009 laying down health rules as regards animal by-products and derived products not intended for human consumption and repealing Regulation (EC) No 1774/2002 (Animal by-products Regulation)». 2009.
[34] E. European Commission, «Comission Regulation (EU) 2017/893 of 24 May 2017 Amending Annexes I and IV to Regulation (EC) No 999/2001 of the European Parliament and of the Council and Annexes X, XIV and XV to Commission Regulation (EU) No 142/ 2011 as Regards the Provisions on Proce.» 2017.
[35] E. European Commission, «Commission Regulation (EU) 2021/1372 of 17 August 2021 amending Annex IV to Regulation (EC) No 999/2001». Consultato: 20 settembre 2021.
[36] M. De Marco et al., «Nutritional value of two insect larval meals (Tenebrio molitor and Hermetia illucens) for broiler chickens: Apparent nutrient digestibility, apparent ileal amino acid digestibility and apparent metabolizable energy», Anim. Feed Sci. Technol., vol. 209, pp. 211–218, nov. 2015.
[37] G. P. Arango Gutierrez, «Aportes Nutricionales de la biomasa de Hermetia illucens L. (Diptera: Stratiomyidae) en la cria de pollos de engorde.», vol. M.Sc. Thesis, Universidad Nacional de Colombia, Bogota, Colombia., 2005.
[38] L. Star, T. Arsiwalla, F. Molist, R. Leushuis, M. Dalim, e A. Paul, «Gradual Provision of Live Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae to Older Laying Hens: Effect on Production Performance, Egg Quality, Feather Condition and Behavior», Animals, vol. 10, fasc. 2, p. 216, gen. 2020.
[39] M. Cullere, M. J. Woods, L. van Emmenes, E. Pieterse, L. C. Hoffman, e A. Dalle Zotte, «Hermetia illucens Larvae Reared on Different Substrates in Broiler Quail Diets: Effect on Physicochemical and Sensory Quality of the Quail Meat», Animals, vol. 9, fasc. 8, p. 525, ago. 2019.
[40] E. Pieterse, S. W. Erasmus, T. Uushona, e L. C. Hoffman, «Black soldier fly (Hermetia illucens) pre-pupae meal as a dietary protein source for broiler production ensures a tasty chicken with standard meat quality for every pot», J. Sci. Food Agric., vol. 99, fasc. 2, pp. 893–903, 2019.
[41] I. Biasato et al., «Partially defatted black soldier fly larva meal inclusion in piglet diets: effects on the growth performance, nutrient digestibility, blood profile, gut morphology and histological features», J. Anim. Sci. Biotechnol., vol. 10, fasc. 1, p. 12, dic. 2019.
[42] S. K. Kar, D. Schokker, A. C. Harms, L. Kruijt, M. A. Smits, e A. J. M. Jansman, «Local intestinal microbiota response and systemic effects of feeding black soldier fly larvae to replace soybean meal in growing pigs», Sci. Rep., vol. 11, fasc. 1, p. 15088, lug. 2021.
[43] T. Spranghers et al., «Gut antimicrobial effects and nutritional value of black soldier fly ( Hermetia illucens L.) prepupae for weaned piglets», Anim. Feed Sci. Technol., vol. 235, pp. 33–42, gen. 2018.
[44] F. M. Dayrit, «The Properties of Lauric Acid and Their Significance in Coconut Oil», J. Am. Oil Chem. Soc., vol. 92, fasc. 1, pp. 1–15, gen. 2015.
[45] J. J. Kabara, D. M. Swieczkowski, A. J. Conley, e J. P. Truant, «Fatty Acids and Derivatives as Antimicrobial Agents», Antimicrob. Agents Chemother., vol. 2, fasc. 1, pp. 23–28, lug. 1972.
[46] D. R. Walters, R. L. Walker, e K. C. Walker, «Lauric Acid Exhibits Antifungal Activity Against Plant Pathogenic Fungi: Antifungal Activity of Lauric Acid», J. Phytopathol., vol. 151, fasc. 4, pp. 228–230, apr. 2003.
[47] E. van Heugten, G. Martinez, A. McComb, e L. Koutsos, «Improvements in Performance of Nursery Pigs Provided with Supplemental Oil Derived from Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae», Animals, vol. 12, fasc. 23, p. 3251, nov. 2022.
[48] L. Bruni, R. Pastorelli, C. Viti, L. Gasco, e G. Parisi, «Characterisation of the intestinal microbial communities of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed with Hermetia illucens (black soldier fly) partially defatted larva meal as partial dietary protein source», Aquaculture, vol. 487, pp. 56–63, feb. 2018.
[49] S. Mancini, R. Moruzzo, F. Riccioli, e G. Paci, «European consumers’ readiness to adopt insects as food. A review», Food Res. Int., vol. 122, pp. 661–678, ago. 2019.
[50] M. Renna et al., «Evaluation of the suitability of a partially defatted black soldier fly (Hermetia illucens L.) larvae meal as ingredient for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) diets», J. Anim. Sci. Biotechnol., vol. 8, fasc. 1, p. 57, dic. 2017.
[51] P. Aleström, J. L. Holter, e R. Nourizadeh-Lillabadi, «Zebrafish in functional genomics and aquatic biomedicine», Trends Biotechnol., vol. 24, fasc. 1, pp. 15–21, gen. 2006.
[52] R. Dahm e R. Geisler, «Learning from Small Fry: The Zebrafish as a Genetic Model Organism for Aquaculture Fish Species», Mar. Biotechnol., vol. 8, fasc. 4, pp. 329–345, ago. 2006.
[53] C. De-Santis e D. R. Jerry, «Candidate growth genes in finfish — Where should we be looking?», Aquaculture, vol. 272, fasc. 1–4, pp. 22–38, nov. 2007.
[54] G. Sogari, M. Amato, I. Biasato, S. Chiesa, e L. Gasco, «The Potential Role of Insects as Feed: A Multi-Perspective Review», Animals, vol. 9, fasc. 4, p. 119, mar. 2019.
[55] M. Zarantoniello et al., «A six-months study on Black Soldier Fly (Hermetia illucens) based diets in zebrafish», Sci. Rep., vol. 9, fasc. 1, p. 8598, dic. 2019.
[56] E. European Commission, Commission Regulation (EU) 2021/1925 of 5 November 2021 Amending Certain Annexes to Regulation (EU) No 142/2011 (…). 2021.
[57] T. Klammsteiner et al., «The Core Gut Microbiome of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Raised on Low-Bioburden Diets», Front. Microbiol., vol. 11, p. 993, mag. 2020.
[58] A. Osimani et al., «The bacterial biota of laboratory-reared edible mealworms ( Tenebrio molitor L.): From feed to frass», Int. J. Food Microbiol., vol. 272, pp. 49–60, mag. 2018.
[59] T. I. P. of I. for F. and F. IPIFF, «Fact sheet on insect frass». 2021.
Arianna Cattaneo
Arianna Cattaneo è al terzo anno di dottorato in “Agrifood and Environmental Sciences” presso l’Università di Trento e l’azienda BEF Biosystems (Torino). Dopo aver conseguito la laurea triennale e magistrale in Scienze e Tecnologie Alimentari presso l’Università di Milano, si sta dedicando allo studio della mosca soldato nera come strumento di valorizzazione di biomasse agroalimentari, assicurandone il benessere durante l’allevamento.
